histoloogia on inimese koe uurimine. See termin koosneb kahest terminist kreeka ja ladina keeles. „Histos” tähendab kreeka keeles „kude” ja „logod” tähendab ladina keeles õpetamist.
Mis on histoloogia?
Histoloogias kasutavad arstid erinevate struktuuride struktuuri tuvastamiseks tehnilisi abivahendeid, näiteks valgusmikroskoopi.
Mikroskoopiline anatoomia jagab elundid vastavalt nende komponentidele, mis muutuvad väiksemaks ja väiksemaks, mida sügavamale uurimine erinevatesse struktuuridesse ulatub. Varase diagnoosimise, patoloogia, anatoomia ja bioloogia valdkonnad käsitlevad peamiselt seda meditsiinivaldkonda.
Hoolitsused ja teraapiad
Mikroskoopiline anatoomia jagab elundid vastavalt suurusele ja komponentidele kolme rühma. Histoloogia kui inimkoe uurimine on bioloogia, meditsiini, anatoomia ja patoloogia peamine komponent.
Tsütoloogia läheb juba sügavamale inimkoe kihtidesse ning tegeleb raku teooria ja funktsionaalse koostisega. Molekulaarbioloogia on pühendatud inimrakkude väikseimatele komponentidele - molekulidele, mida nimetatakse ka osakesteks. Histoloogia peamine ülesanne on kasvajate varajane diagnoosimine. Parimate kontrollmeetodite abil selgitavad arstid välja, kas need on patoloogilised muutused, st pahaloomulised kasvajad või kas kude on endiselt terve ja kasvajad on healoomulised. Lisaks suudavad histoloogid tuvastada bakteriaalseid, parasiitide ja põletikulisi haigusi, aga ka ainevahetushaigusi.
Koeteooria on ka histoloogiliste leidude põhjal lähtepunkt hilisematele terapeutilistele lähenemisviisidele. Histoloogid ja patoloogid kasutavad histoloogiat, et muuta "väikesed asjad suureks või nähtavaks". Osa haigestunud koest eemaldatakse patsiendilt proovi ekstsisiooniga (biopsia). Seejärel uurib patoloog seda koeproovi, tehes mikromeetri õhukesed lõikamismustrid. Järgmisel etapil värvitakse need mustrid ja vaadatakse neid valguse mikroskoobi all. Mõnikord kasutatakse ka kõrgresolutsiooniga elektronmikroskoopi, kuid seda kasutatakse peamiselt teadusuuringutes. Enne uurimist tegeleb histotehnoloogia koe töötlemisega. Selle sammu eest vastutab meditsiiniline tehniline assistent (MTA). See fikseerib koe stabiliseerimise saavutamiseks.
Assistent vaatab lõigatud kudet makroskoopiliselt (koos silmaga), tühjendab selle ja immutab vedelas parafiinis. Seejärel blokeeritakse koeproov parafiiniga ja järgmises etapis tehakse tükk läbimõõduga 2 kuni 5 um. See kinnitatakse klaasklaasile ja värvitakse. Tavaline tehnika tase on FFBE preparaadi, "formaliiniga fikseeritud parafiiniga manustatud koe", tootmine. Koeproov värvitakse hematoksüliin-eosiiniga. See protsess võtab esimesest kuni viimase toiminguni üks või kaks päeva. Vähem aeganõudev kudede uuring on lõigu kiire uurimine. Seda tehakse alati siis, kui kirurg vajab operatsiooni ajal teavet eemaldatud koe kohta.
Näiteks kui kirurg eemaldab kasvaja neerust, vajab ta operatsiooni ajal teavet kudede olemuse kohta. Ta peab teadma, kas kasvaja on juba täielikult eemaldatud või kas pahaloomuline kude servatsoonides näitab edasisi patoloogilisi muutusi. Jao kiire läbivaatuse tulemused määravad kindlaks operatsiooni edasise käigu. Koeproov külmutatakse kümne minuti jooksul temperatuuril -20 ° C ja stabiliseeritakse. Mikrotoomi abil tehakse 5–10 um suurune sektsioon, mis kinnitatakse slaidina klaasplaadile ja värvitakse. Leiud edastatakse viivitamatult operatsioonituppa, et kirurg saaks teha otsuse operatsiooni edasise käigu kohta.
Diagnostika ja läbivaatusmeetodid
Histoloogia kõige olulisemad tehnilised abivahendid on erinevad värvimismeetodid. Histoloogia klassifitseerib rakustruktuurid vastavalt nende värvireaktsioonile kasutatud värvaine suhtes. Need on bioloogilised plekid. Neutrofiilide rakustruktuure ei värvita ei happeliste ega aluseliste värvainetega.
Koostisosad on lipofiilsed. Basofiilsed rakustruktuurid töötavad aluseliste värvainetega nagu hematoksüliin. Atsidofiilsed rakustruktuurid on värvitud aluseliste ja happeliste värvainetega nagu eosiin, happe fuksiin ja pikriinhape. Muud rakustruktuurid on nukleofiilsed ja argyrofiilsed. Argyrofiilsed rakustruktuurid seovad hõbeda ioone, nukleofiilseid DNA-sid ja põhilisi värvaineid. Kõige sagedamini kasutatakse hematoksüliin-eosiini värvimist (HE värvimist) rutiinse ja ülevaatevärvina arvutiga juhitavate värvimismasinate abil. Samal ajal kasutatakse üksikute küsimuste jaoks spetsiaalseid käsitsi värvaineid.
Histokeemilised uuringud annavad keemiliste-füüsikaliste protsesside keeruka pildi elektroadorptsiooni, difusiooni (jaotust) ja pindadevahelist adsorptsiooni silmas pidades laengu jaotusest värvainete molekulides. Iooniline side loob peamise sidumisjõu happeliste värvainete sidumisel aluseliste valkudega. Histokeemilistes protsessides reageerib värvaine koekomponendile. Ensüümi histokeemilised meetodid põhjustavad värvuse arengut raku enda ensüümide aktiivsuse kaudu. Klassikalist histotehnoloogiat on immunohistokeemiaga täiendatud alates 1980. aastatest. See tõendab raku omadusi antigeeni-antikeha reaktsiooni põhjal. See tehakse nähtavaks mitmesektsioonilise tehnika abil, mis põhineb värvusreaktsioonil antigeeni (valgu) asukohas.
In situ hübridisatsioon leiutati kümmekond aastat hiljem. Teatud nukleotiidijärjestused tuvastatakse kaheahelalise DNA sulatamise ja üksikute ahelate spontaanse dokkimise teel, kasutades RNA või DNA. Nukleiinhappejärjestused kuvatakse fluorokroommärgistusega sondide abil. Seda meetodit nimetatakse fluorestsents-in situ hübridisatsiooniks (FISH).
Olulised värvimismeetodid on asaani värvimine, Preisi sinine reaktsioon, Golgi värvimine, Gram värvimine ja Giemsa värvimine. Need värvimismeetodid toimivad erütrotsüütide tuumade, punakas tsütoplasma, siniste retikulaarsete kiudude ja kollageenide, punaste lihaskiudude, "kolmevalentsete raudioonide" tuvastamise, üksikute ioonide hõbetamise, bakterite diferentseerumise ja vererakkude värvimise eristamisega.
